RESUMEN

revmar

Revista Ciencias Marinas y Costeras

Rev. Cienc. Mar. Cost

1659-455X 1659-407X

Universidad Nacional, Costa Rica

10.15359/revmar.12-1.4

Artículo

Lista actualizada de la flora marina bentónica de cinco arrecifes coralinos del norte de Veracruz, México

Updated list of marine benthic flora from five coral reefs in northern Veracruz, Mexico

Cruz-Francisco

Vicencio de la

¹ Orduña-Medrano

Rosa Estela

² González-González

Marlene

1 Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias, Campus Tuxpan, Universidad Veracruzana. Tuxpan, Veracruz, México. viccruz@uv.mx ORCID: orcid.org/0000-0001-8339-6730 Universidad Veracruzana Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias Universidad Veracruzana

Tuxpan Veracruz

Mexico viccruz@uv.mx 2 Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias, Campus Tuxpan, Universidad Veracruzana. Tuxpan, Veracruz, México. ORCID: or-cid.org/0000-0003-2458-6221 Universidad Veracruzana Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias Universidad Veracruzana

Tuxpan Veracruz

Mexico 3 Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias, Campus Tuxpan, Universidad Veracruzana. Tuxpan, Veracruz, México. ORCID: orcid.org/0000-0002-2095-8457 Universidad Veracruzana Facultad de Ciencias Biológicas y Agropecuarias Universidad Veracruzana

Tuxpan Veracruz

Mexico

Jan-Jun 2020

12 1 60 88 14 01 2020 13 04 2020

Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia Creative Commons

RESUMEN

El macrofitobentos marino cumple un papel importante en los arrecifes coralinos, sin embargo, son de los grupos biológicos menos estudiados en el Sistema Arrecifal Lobos-Tuxpan, Veracruz, México (SALT). El objetivo del presente estudio fue actualizar la lista taxonómica de las especies de algas y fanerógamas presentes en los arrecifes Tuxpan, Enmedio, Tanhuijo, Lobos y Oro Verde. Entre el periodo 2014-2018, se realizaron un total de 38 muestreos, las exploraciones fueron en la laguna arrecifal y en las pendientes profundas de los arrecifes mediante buceos errantes. La búsqueda de algas y fanerógamas marinas se realizó en cinco tipos de sustratos: arena, guijarros, rocas coralinas, pastos marinos y zona de corales vivos. Así mismo, el listado taxonómico se complementó con registros de especies reportadas previamente para el SALT. La lista taxonómica actualizada está compuesta por 130 especies: 2 pertenecen a Cyanobacteria, 55 Rhodophyta, 23 Ochrophyta, 48 Chlorophyta y 2 Tracheophyta representadas por Halophila decipiens y Thalassia testudinum. Del total de especies, 28 taxa se citan por primera vez para la zona de estudio. Además, Sphorochnus pedunculatus constituye un nuevo registro para el suroeste del golfo de México. Los sustratos con mayor riqueza de algas fueron rocas coralinas y guijarros. Los arrecifes emergentes Lobos, Enmedio y Tuxpan presentaron mayor riqueza florística. La presente información representa un buen avance en el conocimiento de la flora marina y puede ser de utilidad para la toma de decisiones eficaces en materia de manejo, en especial para las fanerógamas que presentan un estatus de riesgo.

ABSTRACT

Marine macrophytobenthos plays an important role in coral reefs; however, it is one of the least studied biological groups in the Lobos-Tuxpan Reef System (SALT) in Veracruz, Mexico. The objective of the present study was to update the taxonomic list of the algae and phanerogam species present in the Tuxpan, Enmedio, Tanhuijo, Lobos, and Oro Verde reefs. During the 2014-2018 period, 38 surveys were conducted in the reef lagoon and the deep slopes of the reefs by errant dives. Algae and marine phanerogams were surveyed on five types of substrates: sand, pebbles, coral rocks, seagrasses, and live coral area. In addition, the taxonomic list was complemented with records of species previously reported for SALT. The updated taxonomic list includes 130 species: 2 being Cyanobacteria, 55 Rhodophyta, 23 Ochrophyta, 48 Chlorophyta, and 2 Tracheophyta, represented by Halophila decipiens and Thalassia testudinum. Of the total species, 28 taxa are cited for the first time for the study area. Additionally, Sphorochnus pedunculatus constitutes a new record for the southwest of the Gulf of Mexico. The substrates with the highest algae richness were coral rocks and pebbles. The Lobos, Enmedio, and Tuxpan emerging reefs presented greater floristic wealth. This information represents a good advance in the knowledge of marine flora and can be useful for effective management decision-making, especially for phanerogams, which are in a risk status.

Palabras clave: algas arrecifes fanerógamas fitobentos sustratos

Keywords: algae reefs phanerogams phytobenthos substrates

INTRODUCCIÓN

El macrofitobentos marino incluye a las algas y pastos marinos, ambos grupos son importantes en los ecosistemas arrecifales dado que forman parte del componente bentónico de los arrecifes de coral. Las algas arrecifales manifiestan una gran diversidad de especies, son abundantes y contribuyen en la productividad primaria, además son competidores por el espacio con los corales, y sus frondas proveen refugio y alimento para la fauna marina (Fong & Paul, 2011; Ramírez-Rodríguez & Blanco-Pérez, 2011; Aguilera-Pérez & De la Cruz-Francisco, 2017). Por igual, los pastos marinos o fanerógamas desempeñan un papel importante en los arrecifes dado son productores primarios, participan en el reciclamiento de nutrientes, atenúan el oleaje, retienen el sedimento, sus praderas sirven de crianza, alimento y reproducción para la fauna marina, y constituyen un excelente sustrato para la fijación de epifitas (Romeu, 1996; Ramírez-García et al. 2007; Cervantes-Maldonado & Quintero, 2016).

En los arrecifes coralinos de Veracruz, la comunidad de algas está constituida principalmente por algas rojas, los géneros más comunes son Acanthophora, Amphiroa, Ceramium, Galaxaura, Gracilaria, Hypnea, Jania y Laurencia, de igual manera, la abundancia de algas verdes es importante y representada por los géneros Caulerpa, Cladophora y Ulva, también, las algas pardas son predominantes en los arrecifes esencialmente por los géneros Dictyota y Padina (Lehman, 2010; Ramírez-Rodríguez & Blanco-Pérez, 2011). Respecto a los pastos marinos, dos especies se han reportado en los arrecifes veracruzanos: Syringodium filiforme y Thalassia testudinum, esta última fanerógama es la más abundante en cobertura y biomasa, sobre todo se establece en la laguna arrecifal (Godínez-Ortega et al. 2015).

Si bien, Veracruz es la localidad más explorada y con mayor diversidad ficológica para las costas mexicanas del golfo de México (Ortega et al. 2001; Pedroche & Sentíes, 2003), aún se considera que es limitado el conocimiento de la riqueza florística ligada a los arrecifes veracruzanos a pesar de los esfuerzos de investigación realizados principalmente en el Sistema Arrecifal Veracruzano (SAV) (Galicia-García & Morales-García, 2007; Robinson et al. 2012; Galicia-García et al. 2013; Godínez-Ortega et al. 2015; 2019), además, se enfatiza que el ambiente submareal ha sido poco explorado (Ramírez-Rodríguez & Blanco-Pérez, 2011; Godínez-Ortega et al. 2019). Respecto a los pastos marinos, también han sido objeto de estudio, a la fecha se tiene conocimiento de su distribución, abundancia, biomasa, productividad y crecimiento (Lot-Helgueras, 1971; Ibarra-Morales & Abarca-Arenas, 2007; Ramírez-García et al. 2007; Arellano-Méndez et al. 2016), así como su estructura comunitaria (Godínez-Ortega et al. 2015).

De forma inversa, el Sistema Arrecifal Los Tuxtlas (SAT) carece de inventarios ficológicos, este sistema se distribuye al sur de Veracruz y apenas se están haciendo esfuerzos por determinar su biodiversidad. Respecto al Sistema Arrecifal Lobos-Tuxpan (SALT), ubicado al norte de Veracruz, son pocas las investigaciones que han explorado la flora marina donde la laguna arrecifal, ha sido la zona arrecifal más estudia. Entre la década de los sesenta y principios de los setenta, se realizaron los primeros estudios de la flora marina en el SALT, inicialmente, Barrientos (1965) aporta un listado preliminar de las algas del arrecife Blanquilla. Huerta-Múzquiz & Barrientos (1965) contribuyen con los primeros registros de algas para el arrecife Lobos, y más tarde, Chávez et al. (1970) incrementan el conocimiento florístico con datos de la composición y distribución de las algas y del pasto marino Thalassia testudinum, información que a la fecha no ha sido actualizada. Posteriormente, a principios de la década del 2000, varios estudios realizados en el arrecife Tuxpan determinaron la composición y distribución de las algas en diferentes hábitats arrecifales (Ortega et al. 2001; González-Gándara et al. 2007; Aguilera-Pérez & De la Cruz-Francisco, 2017). Mientras, para los arrecifes Enmedio y Oro Verde se tiene poco conocimiento de la flora marina, dado que se han registrado menos de 25 especies de algas para estos arrecifes (González-González et al. 2016; Luna-Ortega & De la Cruz-Francisco, 2017).

Si bien, todos estudios han enriquecido el conocimiento de la flora marina para el SALT, la realización de más estudios y exploraciones son necesarias para incrementar el conocimiento sobre la riqueza del macrofitobentos en lugares arrecifales menos conocidos, como las pendientes profundas (Pedroche & Sentíes, 2003; Galicia-García & Morales-García, 2007). Por ello, el propósito del presente trabajo fue proporcionar un listado actualizado de la flora marina bentónica, basado en recolectas y observaciones hechas desde el 2014 al 2018 en cinco de los diez arrecifes del SALT, así como la integración de registros previos de la literatura existente. Dado que el SALT es área natural protegida, la información presentada en este trabajo puede servir de apoyo para los planes de manejo y conservación a fin de proteger aquellas especies que presentan un estatus de riesgo con base en la NOM-059-SEMARNAT-2010 (DOF, 2019).

MATERIALES Y METODOS

Área de estudio. Al norte del estado de Veracruz, en el golfo de México (Fig. 1) se localiza el Área Natural Protegida Sistema Arrecifal Lobos-Tuxpan (SALT), decretado en el año 2009 como Área de Protección de Flora y Fauna de México (DOF, 2009). Está integrado por dos polígonos de protección; el polígono Lobos lo componen tres arrecifes coralinos emergentes: Lobos, Medio y Blanquilla, mientras el polígono Tuxpan lo conforman tres arrecifes emergentes: Tanhuijo, Enmedio, Tuxpan y el arrecife sumergido Pantepec (Ortiz-Lozano et al. 2013). En las inmediaciones de estos polígonos se han cartografiado otros arrecifes sumergidos nombrados como arrecife Oro Verde, arrecife Pantepec Sur y arrecife Corazones (Ortiz-Lozano et al. 2019) (Fig. 1). Este complejo arrecifal forma parte del Corredor Arrecifal del suroeste del golfo de México (Ortiz-Lozano et al. 2019) (Fig. 1).

Fig. 1 Localización geográfica de los arrecifes coralinos que conforman el Sistema Arrecifal Lobos-Tuxpan (SALT)

Para elaborar la lista taxonómica del macrofitobentos, se efectuaron un total de 38 salidas a los arrecifes del SALT durante el 2014-2018. Se dedicó un tiempo de trabajo en cada salida de 4 h/día. Para el arrecife Enmedio, se realizaron al menos 12 muestreos (equivalente a 46 h) que procedieron de estudios que determinaron la distribución y cobertura bentónica de dicho arrecife (De la Cruz-Francisco et al. 2016; González-González et al. 2016) durante abril-noviembre 2015 y abril-mayo 2016, donde gran parte del material biológico recolectado quedó pendiente por identificar, posteriormente se efectuaron dos salidas más en abril 2017 (8 h) y abril de 2018 (8 h). Mientras, para el arrecife Tuxpan se efectuaron seis muestreos (24 h) en los meses de mayo y julio 2014; abril 2015; mayo 2016 y 2017, así también, seis exploraciones (24 h) se efectuaron para el arrecife Tanhuijo (noviembre 2014; julio-agosto 2015) y arrecife Oro Verde (junio-agosto 2015) respectivamente. Respecto al arrecife Lobos, se realizó un muestreo en mayo 2014 (4 h), después en noviembre 2016 (4 h), y por último, una estancia de cinco días en noviembre de 2017 (20 h).

Los muestreos consistieron en la búsqueda de algas y fanerógamas marinas en cinco tipos de sustratos, en especial a) parches de arena, b) guijarros, c) rocas, d) y en zonas de pastos marinos (Thalassia testudinum L.) y de e) corales vivos. Para esto, se aplicó la técnica del buzo errante, el cual consistió en nadar libremente durante 20-30 minutos en cada uno de los sustratos establecidos para la identificación y recolecta de especímenes dudosos. En cada ambiente se tomaron datos de los ejemplares observados (profundidad, sustrato, localidad, coordenadas, fecha, colector, así como datos de color, forma y textura) y posteriormente se recolectaron (solo los necesarios para la identificación) desprendiéndolas desde la base del sustrato con una navaja para el caso de las macroalgas corticadas, foliosas y sifonales, mientras para los tapetes algales se utilizó una espátula y se recolectaron alrededor de dos muestras de 20 cm² por muestreo (Flores-Leiva et al. 2010). Las muestras se colocaron en bolsas de polietileno y fueron etiquetadas, luego se almacenaron en neveras de unicel para protegerlas de la radiación solar (Flores-Leiva et al. 2010). Cabe mencionar, que para la laguna arrecifal, los muestreos se realizaron con equipo de buceo libre, mientras, para las zonas profundas se efectuaron inmersiones de 2-20 m de profundidad con equipo de buceo autónomo. En el laboratorio de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Veracruzana, las muestras biológicas se preservaron en líquido, mediante una solución de formalina al 4% (Flores-Leiva et al. 2010) y después se depositaron en la colección biológica de la propia facultad.

Para la identificación de las algas, primero se realizaron cortes transversales de los talos con navajas de afeitar (marca Gillette) y un microscopio estereoscópico (marca Nikon SMZ745), posteriormente se prepararon laminillas temporales (usando portaobjetos y cubreobjetos) para observar las estructuras reproductoras y vegetativas en un microscopio óptico (marca Nikon modelo Eclipse E-100). También, se tuvieron en cuenta especies epifitas en macroalgas frondosas (e. g. Galaxaura, Laurencia, Padina, Dictyota, Rhipocephalus, Halimeda). Para los ejemplares con estructura calcárea de las familias Corallinacea, Dichotomosiphonaceae, Udoteaceae, y Dasycladaceae, se utilizó ácido clorhídrico al 15% para la descalcificación de los tejidos (Aguilar-Rosas et al. 2010). La determinación del material algal se llevó a cabo mediante guías de identificación (Littler & Littler, 2000; León-Álvarez et al. 2007) y trabajos especializados (Sentíes & Fujii, 2002; Solé & Foldats, 2003; Bandeira-Pedrosa et al. 2004; Alves et al. 2010; Pacheco-Cervera et al. 2010; Robinson et al. 2012; Galicia-García et al. 2013; Mendoza-González et al. 2014; Moura et al. 2014; Vieira et al. 2016; Godínez-Ortega et al. 2019). Para el reconocimiento de las fanerógamas marinas se utilizaron los trabajos de van Tussenbroek et al. (2010) y Martínez-Daranas et al. (2013).

Para complementar el listado taxonómico, se adicionaron los registros de algas reportados para el SALT con base en los trabajos de Huerta-Múzquiz & Barrientos (1965), Chávez et al. (1970), Ortega et al. (2001), González-Gándara et al. (2007), González-González et al. (2016), Aguilera-Pérez & De la Cruz-Francisco (2017) y Luna-Ortega & De la Cruz-Francisco (2017). Con la información obtenida, se elaboró un listado sistemático que sigue al criterio de Zúñiga-Ríos et al. (2012) para las categorías taxonómicas superiores: División y Orden, mientras, las especies dentro de cada orden se establecieron alfabéticamente. Además, la nomenclatura de los nombres científicos se actualizó al consultar la base de datos Algaebase (Guiry & Guiry, 2019).

RESULTADOS

En el presente estudio se identificaron en total 92 especies de algas y dos especies de fanerógamas en el sistema arrecifal SALT. Se complementaron estos resultados con las 102 especies que han sido reportadas, con anterioridad, en la literatura, el inventario taxonómico de la flora marina bentónica para esta zona queda integrada por 130 especies, repartidas en cinco divisiones y dos reinos (Cuadro 1). Rhodophyta (algas rojas) y Chlorophyta (algas verdes) presentaron mayor número de taxones con 55 y 48 especies respectivamente. Las familias con mayor riqueza fueron: Dictyotaceae con 16 especies, seguido de Rhodomelaceae con 10 especies y Caulerpaceae con nueve especies (Cuadro 2). Del total de la riqueza, 28 especies encontradas en este estudio constituyen los primeros registros para el área natural protegida, en su mayoría corresponden a Chlorophyta (Cuadro 1 y 2). Adicionalmente, se amplía la distribución de Sporochnus pedunculatus para el suroeste del golfo de México, su descripción morfológica se muestra al final de esta sección.

Cuadro 1 Riqueza florística registrada en los arrecifes del SALT. Entre paréntesis se cita el número de especies que son reportadas en la literatura (r), las que se registraron en el presente estudio (obs) y las que constituyen nuevos registros para la zona (nr)

División Tuxpan Enmedio Tanhuijo Oro Verde Lobos Blanquilla SALT

Cyanobacteria 2 (2^obs) 2 (2^obs) 22^obs 1 (1^obs) 2(1^r/1^obs) 0 2 (1^r/2^obs/1^nr)

Rhodophyta 32 (21^r/14^obs) 30 (2^r/29^obs) 22^obs 25 (10^r/16^obs) 36 (23^r/20^obs) 19^r 55 (49^r/37^obs/6^nr)

Ochrophyta 13 (11^r/7^obs) 13 (1^r/13^obs) 6^obs 8 (8^r) 18 (11^r/12^obs) 4^r 23 (19^r/14^obs/4^nr)

Chlorophyta 34 (16^r/20^obs) 34 (8^r/29^obs) 22^obs 9 (5^r/4^obs) 33 (19^r/29^obs) 4^r 48 (32^r/39^obs/16^nr)

Tracheophyta 2 (1^r/2^obs) 1 (1^obs) 1^obs 0 2 (1^r/2^obs) 0 2 (1^r/2^obs/1^nr)

Total 83 (49^r/45^obs) 80 (11^r/74^obs) 53 43 (23^r/21^obs) 91 (55^r/64^obs) 27 130 (102^r/94^obs/28^nr)

División	Tuxpan	Enmedio	Tanhuijo	Oro Verde	Lobos	Blanquilla	SALT
Cyanobacteria	2 (2^obs)	2 (2^obs)	22^obs	1 (1^obs)	2(1^r/1^obs)	0	2 (1^r/2^obs/1^nr)
Rhodophyta	32 (21^r/14^obs)	30 (2^r/29^obs)	22^obs	25 (10^r/16^obs)	36 (23^r/20^obs)	19^r	55 (49^r/37^obs/6^nr)
Ochrophyta	13 (11^r/7^obs)	13 (1^r/13^obs)	6^obs	8 (8^r)	18 (11^r/12^obs)	4^r	23 (19^r/14^obs/4^nr)
Chlorophyta	34 (16^r/20^obs)	34 (8^r/29^obs)	22^obs	9 (5^r/4^obs)	33 (19^r/29^obs)	4^r	48 (32^r/39^obs/16^nr)
Tracheophyta	2 (1^r/2^obs)	1 (1^obs)	1^obs	0	2 (1^r/2^obs)	0	2 (1^r/2^obs/1^nr)
Total	83 (49^r/45^obs)	80 (11^r/74^obs)	53	43 (23^r/21^obs)	91 (55^r/64^obs)	27	130 (102^r/94^obs/28^nr)

Cuadro 2 Listado actualizado de la flora bentónica presente en el sistema arrecifal Lobos-Tuxpan, México.

Especie Presencia en el SALT Prof. (m) Tipo sustrato

División: Cyanobacteria

Clase: Cyanophyceae

Orden: Oscillatoriales

1. Lyngbya majuscula Harvey ex Gomont Tx⁸,En⁸,Th⁸, OrV⁸, Lb³ 1-20 A, B

2. Symploca hydnoides Kützing ex Gomont Tx⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 1 A, B

División Rhodophyta

Clase: Florideophyceae

Orden: Nemaliales

3. Dichotomaria obtusata (J. Ellis & Solander) Lamarck Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸ 1-20 A, B

4. Dichotomaria marginata (J. Ellis & Solander) Lamarck En⁸, Th⁸, OrV^{7, 8}, Lb⁸ 1-20 A, B

5. Galaxaura rugosa (J. Ellis & solander) J.V. Lamouroux Tux^{4, 6, 8}, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb^{2, 3, 8}, B¹ 1-20 A, B, C, F

6. Tricleocarpa cylindrica (J. Ellis & Solander) Huisman & Borowitzka Tux⁴, OrV⁸ 10-20 A, B, C

7. Tricleocarpa fragilis (Linnaeus ) Huisman & R.A. Townsend Tux⁴, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹ 1-20 A, B, C, F

8. Gloiocallis dendroidea (P. Crouan & H. Crouan) Showe M. Lin, Huisman & D.L. Ballantine, 2014 B¹ 1 ND

9. Liagora ceranoides J.V. Lamouroux Tux⁴, En⁸, Th⁸ 1 A, B, C

10. Nemalion helminthoides (Velley) Batters Lb^{1, 2, 3} 1 C, F

Orden: Corallinales

11. Jania capillacea Harvey Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹ 1-20 E, Halimeda opuntia, Galaxaura rugosa, Laurencia obtusa, Stypopodium zonale

12. Jania adhaerens J.V. Lamouroux Tux⁴, En⁸, Th⁸ 1-20 A, Halimeda opuntia, Laurencia obtusa

13. Jania rubens (Linnaeus) J.V. Lamouroux Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸ 1-20 A, E, Halimeda opuntia, Laurencia obtusa

14. Amphiroa beauvoisii J.V. Lamouroux OrV⁷ 10-20 A

15. Amphiroa brasiliana Decaisne OrV⁷ 10-20 A

16. Amphiroa fragilissima (Linnaeus) J.V. Lamouroux Tux^{4, 8}, En⁸, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹ 1 A, B, F, Padina gymnospora, Halimeda opuntia,

17. Amphiroa hancockii W.R. Taylor, 1942 B¹ 1 ND

18. Amphiroa rigida J.V. Lamouroux Tux⁷, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹ 1-20 A, B, F, Padina gymnospora, Halimeda opuntia

19. Goniolithon decutescens (Heydrich) Foslie in Howe Lb^{1, 2} 1 A, B, F, Padina gymnospora, Halimeda opuntia,

20. Phenophyllum fragile Kützing Lb^{1, 2, 3}, B¹ 1 A, B, Hypnea spinella, Laurencia obtusa

Orden: Gelidiales

21. Gelidium americanum (W. R. Taylor) Santelices Lb³ 1 A, B

22. Parviphycus trinitatensis (W. R. Taylor) M. J. Wynne W. R. Taylor Tux⁶, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb⁸ 5-20 A, B

23. Pterocladiella sanctarum (Feldmann & Hamel) Santelices OrV⁷ 20 A, B

24. Pterocladiella capillacea (S. G. Gmelin) Santelices & Hommersand Tux⁶ 10-20 A, B

Orden: Bonnemaisoniales

25. Asparagopsis taxiformis (Delile) Trevisan de Saint-Léon Tux⁸, En⁵, Th⁸, OrV⁷, Lb⁸ 10-20 A, D

Orden: Nemastomatales

26. Predaea feldmannii Børgesen Tux⁸, En^{6, 8}, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸ 5-20

Orden: Rhodymeniales

27. Champia parvula (C. Agardh) Harvey Lb^{1, 2, 3} 1 F, Hypnea spinella, Dictyota bartayresiana, Halimeda opuntia

28. Coelothrix irregularis (Harvey) Børgesen Tux⁵, En⁸ 1 A, Halimeda opuntia

29. Ceratodictyon intricatum (C. Agardh) R.E. Norris Tux⁸, En⁸, B¹ 1 A, B

Orden: Ceramiales

30. Centroceras clavulatum (C. Agardh) Montagne Tux^{6, 8}, En⁸, Th⁸, Lb^{3, 8} 10-20 A, B, Dictyota bartayresiana

31. Ceramium brevizonatum var. caraibicum H.E. Petersen & Børgesen in Børgesen Tux⁸, En⁸, Lb⁸ 1-20 A, B, Laurencia obtusa

32. Ceramium cimbricum H.E. Petersen in Rosenvinge En⁸, OrV⁷, Lb⁸ 1-20 A, B, F, Dictyota menstrualis, Laurencia obtusa

33. Ceramium cruciatum F.S. Collins & Hervey Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁷ 10-20 Halimeda opuntia, Laurencia intricata

34. Ceramium flaccidum (Harvey ex Kützing) Ardissone Lb^{2, 3} 1 F, Dictyota bartayresiana, Laurencia intricata

35. Ceramium subtile J.Agardh Lb¹ 1 ND

36. Ceramium virgatum Roth Tux⁶, OrV⁷, B1 10-20 Laurencia obtusa, Rhipocephalus phoenix f. brevifolius

37. Crouania attenuata (C. Agardh) J. Agardh En⁸, OrV⁸ 10-20 A, Dictyota menstrualis, Laurencia obtusa

38. Spyridia filamentosa (Wulfen) Harvey Tux⁸, Lb³ 1-20 A, B, F

39. Spyridia hypnoides (Bory) Papenfuss Tux⁸, En⁸, Lb¹ 1-20 A, B, D

40. Anotrichium tenue (C. Agardh) Nägeli OrV⁸, B¹ 10-20 Laurencia intricata, Hypnea spinella

41. Griffithsia schousboei Montagne OrV⁸ 10-20 Stypopodium zonale

42. Wrangelia argus (Montagne) Montagne Tux⁴, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸, B¹ 1-20 A, B, D, Amphiroa fragilissima, Laurencia obtusa

43. Dictyurus occidentalis J. Agardh Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸ 10-20 A

44. Acanthophora spicifera (M. Vahl) Børgesen Tux⁴, En⁸, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹ 1 A, B, D, C, F

45. Chondria littoralis Harvey Tux⁵ 1 A, B, D

46. Digenea simplex (Wulfen) C. Agardh Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹ 10-20 A, B, D

47. Laurencia intricata J.V. Lamouroux Tux⁵, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 1 A, B, D

48. Laurencia obtusa (Hudson) J.V. Lamouroux Tux⁷, En⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹ 1-20 A, B, D

49. Palisada perforata (Bory de Saint-Vincent) K. W. Nam Lb^{1, 2, 3, 8} 1 A, B, D

50. Yuzurua poiteaui (J.V. Lamouroux) Martin-Lescanne Tux⁴, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹ 1-20 A, B, D, Lobophora sp., Halimeda opuntia

51. Neosiphonia sphaerocarpa (Borgesen) Kim & Lee Lb^{1, 2, 3} 1 A, B, D

52. Polysiphonia subtilissima Montagne OrV⁸, B¹ 10-20 A, B, D

53. Wrightiella blodgettii (Harvey) F. Schmitz Tux⁵ 1 A

Orden: Gigartinales

54. Hypnea musciformis (Wulfen) J.V. Lamouroux Tux⁴, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 1 A, B, D, C, F

55. Hypnea spinella (C.Agardh) Kützing Tux⁴, En⁸, Th⁸, Lb⁸, B¹ 1 A, B, D, C, F

56. Hypnea valentiae (Turner) Montagne En⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹ 1 A, B, D, C, F

57. Wurdemannia miniata (Sprengel) Feldmann & Hamel Lb^{1, 2, 3} 1 A, F

División: Ochrophyta

Clase: Phaeophyceae

Orden: Sphacelariales

58. Sphacelaria tribuloides Meneghini Tux⁶, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb ^{1, 2, 3, 8}, B¹ 1-20 A, B, Halimeda opuntia

Orden: Ectocarpales

59. Feldmannia mitchelliae (Harvey) H.-S. Kim En⁸, OrV⁷, Lb⁸ 1-20 A, B, F

60. Chnoospora minima (Hering) Papenfuss Lb^{1, 3} 1 A

61. Colpomenia sinuosa (Mertens ex Roth) Derbes & Solier in Castagne Tux^{5, 8}, En⁸, Th⁸, Lb^{3, 8}, B¹ 1 A, B, D, Halimeda opuntia

62. Hydroclathrus clathratus (C. Agardh) Howe Tux⁵, Lb^{1, 2, 3}, B¹ 1 A, B, D

Orden: Dictyotales

63. Canistrocarpus cervicornis (Kützing) De Paula & De Clerck Tux⁶, En⁸, OrV⁷, Lb^{1, 2, 3, 8} 1-20 A, B, C

64. Dictyopteris jamaicencis W. Taylor Tux⁸, En⁸, Lb⁸ 1 A, B

65. Dictyota bartayresiana J.V. Lamouroux Tux^{5, 8}, En⁸, Lb⁸ 1-20 A, B, F, Halimeda opuntia, Galaxaura rugosa

66. Dictyota caribaea Hörnig & Schnetter OrV⁷ 1-20 A, B, C

67. Dictyota crenulata J. Agardh OrV⁷ 10-20 A, B, C

68. Dictyota menstrualis (Hoyt) Schnetter, Hörning & Weber-Peukert Tux^{4, 6, 8}, En⁸, Lb⁸ 1 A, B, C

69. Dictyota pulchella Hörnig & Schnetter Tux^{4, 8}, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb^{2, 8} 10-20 A, B, C, E

70. Dictyota spiralis Montagne OrV⁷ 10-20 A, B, C

71. Lobophora variegata (J.V. Lamouroux ) Womersley ex E.C. Oliveira Tux⁶ 1 A, B, C

72. Lobophora sp. Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 10-20 A, B, C

73. Padina boergesenii Allender & Kraft Tux³, Th³, Lb³ 1 A, B, C

74. Padina gymnospora (Kützing) Sonder Lb^{1, 2}, B¹ 1 A, B, C

75. Padina pavonica ( Linnaeus) Thivy in W. R. Taylor Tux^{3, 6, 8}, En^{5, 8}, Th⁸, Lb^{1, 2, 3} 1 A, B, C

76. Padina perindusiata Thivy in W.R. Taylor Lb³ 1 A, B, C

77. Padina sanctae-crucis Børgesen, 1914 Tux^{4, 8}, En⁸, Lb^{3, 8} 1 A, B, C

78. Spatoglossum schroederi (C. Agardh) Kϋtzing En⁸, Lb⁸ 1 A, B, C

79. Stypopodium zonale J.V. Lamouroux) Papenfuss OrV⁷, Lb⁸ 10-20 A, B, C

Orden: Sporochnales

80. Sporochnus pedunculatus (Hudson) C. Agardh En⁸ 1 A, D

División: Chlorophyta

Clase: Ulvophyceae

Orden: Ulvales

81. Ulva compressa Linnaeus Lb³ 1 A, B

82. Ulva intestinalis Linnaeus Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 1 A, B

83. Ulva flexuosa Wulfen Tux⁸, En⁸, Lb^{1, 2, 3, 8} 1 A, B

84. Ulva lactuca Linnaeus Tux⁸, Lb⁸ 1 A, B, D

Orden: Cladophorales

85. Anadyomene saldanhae A.B. Joly & E.C. Oliveira Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb⁸ 5-20 A, B

86. Anadyomene stellata (Wulfen) C. Agardh Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 5-20 A, B,

87. Microdictyon marinum (Bory de Saint-Vincent) P.C. Silva Tux⁴ 1

88. Cladophoropsis macromeres Taylor Tux⁴ 1 A, D, F

89. Cladophoropsis membranacea (Hofman Bang ex C.Agardh) Børgesen Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8} 1 A, D, F

90. Chaetomorpha antennina (Bory de Saint-Vincent) Kützing (Bory) Kützing Tux⁸, Lb⁸ 1 A, D

91. Chaetomorpha gracilis Kϋtzing Tux⁸, Lb^{1, 2, 3, 8} 1 A, D

92. Chaetomorpha linum (O.F. Müller) Kützing Tux⁸, En⁸, Lb⁸ 1 A, D, F

93. Dictyosphaeria cavernosa (Forsskål) Børgesen (Forsskal) Børgesen Tux^{4, 6}, En⁵, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8} 1 A, B, C, E, F

94. Dictyosphaeria ocellata (M.A. Howe) Olsen-Stojkovich Tux^{4, 6}, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 1 A, B, C, E, F

95. Dictyosphaeria versluysii Weber-van Bosse Tux⁴, En⁸ 1 A, B, C, E, F

96. Valonia macrophysa Kützing 1843 Tux⁶, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb⁸ 1-20 A, B, C, E

97. Valonia ventricosa J. Agardh, 1887 Tux⁶, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3, 8} 1-20 A, B, C, E

Orden: Bryopsidales

98. Bryopsis pennata J.V. Lamouroux Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 1 A, B

99. Bryopsis plumosa (Hudson) C. Agardh Tux⁸, En^{6, 8}, Lb⁸ 1 A, B

100. Derbesia sp. Tux⁴ 1

101. Caulerpa ambigua (Okamura) Prud’homme van Reine y Lokhorst Tux⁴ 1 A, D

102. Caulerpa ashmeadii Harvey 1858 En⁶ 1 A, D

103. Caulerpa chemnitzia (Esper) J.V. Lamououx Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV7, Lb⁸ 5-20 A, D, E

104. Caulerpa cupressoides (Vahl) C. Agardh Tux⁴, Lb^{1, 2, 3, 8} 1 A, D

105. Caulerpa microphysa (Weber-van Bosse) Feldmann Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3, 8} 10-20 A, D, E

106. Caulerpa prolifera (Forsskål) J.V. Lamouroux Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 10-20 A, D

107. Caulerpa racemosa var. macrophysa (Sonder ex Kützing) W.R. Taylor Tux^{4, 8}, En^{5, 8}, Th⁸, OrV⁷, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹ 1-20 A, D, E

108. Caulerpa sertularioides (S.G. Gmelin) M.A. Howe Tux^{4, 8}, En⁸, Th⁸, Lb^{2, 3, 8}, B¹ 1 A, D

109. Caulerpa verticillata f. charoides Weber-Van Bosse Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 8} 10-20 A, E

110. Codium intertextum Collins & Hervey Tux⁸, En⁵, OrV⁷ 10-20 A, B

111. Codium isthmocladum Vickers En⁸ 10-20 A, B

112. Halimeda discoidea Decaisne Th⁸, OrV⁸, Lb⁸ 20 A, B

113. Halimeda goreauii W.R. Taylor Lb¹ 1 A, B

114. Halimeda opuntia (Linnaeus) J.V. Lamouroux Tux⁸, En^{6, 8}, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹ 1 A, B

115. Avrainvillea hayi D.S. Littler & M.M. Littler En⁸ 20 A, D

116. Avrainvillea longicaulis (Kützing) G.Murray & Boodle Lb³ 20 A, D

117. Avrainvillea nigricans f. floridana D.S. Littler & M.M. Littler En⁸ 20 A, D

118. Penicillus capitatus Lamarck En⁸, Th⁸ 1 A, D

119. Penicillus lamourouxii Decaisne Tux⁵,Th⁸, Lb⁸ 1 A, D

120. Penicillus sp. En⁸ 1 A, D

121. Rhipocephalus phoenix f. brevifolius (J.Ellis & Solander) Kützing Tux⁴, En⁵, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8} 1 A, D

122. Rhipocephalus phoenix f. longifolius A. Gepp & E.S. Gepp Tux⁴, En⁵, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8} 1 A, D

123. Udotea flabellum (Ellis et Solander) Howe Lb^{2, 3} 20 A, D

Orden: Dasycladales

124. Neomeris annulata Dickie Tux⁴, En⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹ 10-20 A, D

125. Neomeris mucosa M.Howe En⁸ 10-20 A, D

126. Acetabularia crenulata J.V. Lamouroux En⁸ 20 A, D

127. Acetabularia schenckii K. Möbius Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8} 20 A, D

128. Parvocaulis pusillus (M. Howe) S. Berger, U. Fettweiss, S. Gleissberg, L.B. Liddle, U. Richter, H. Sawitzky & G.C. Zuccarello En⁸ 20 A, D

División: Tracheophyta

Clase: Monocotiledonia

Orden: Alismatales

129. Halophila decipiens Ostenfeld Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸ 20 A, D

130. Thalassia testudinum K.D. Koenig Tux^6,8, Lb^2,8 1 B, D

Especie	Presencia en el SALT	Prof. (m)	Tipo sustrato
División: Cyanobacteria
Clase: Cyanophyceae
Orden: Oscillatoriales
1. Lyngbya majuscula Harvey ex Gomont	Tx⁸,En⁸,Th⁸, OrV⁸, Lb³	1-20	A, B
2. Symploca hydnoides Kützing ex Gomont	Tx⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸	1	A, B
División Rhodophyta
Clase: Florideophyceae
Orden: Nemaliales
3. Dichotomaria obtusata (J. Ellis & Solander) Lamarck	Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸	1-20	A, B
4. Dichotomaria marginata (J. Ellis & Solander) Lamarck	En⁸, Th⁸, OrV^{7, 8}, Lb⁸	1-20	A, B
5. Galaxaura rugosa (J. Ellis & solander) J.V. Lamouroux	Tux^{4, 6, 8}, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb^{2, 3, 8}, B¹	1-20	A, B, C, F
6. Tricleocarpa cylindrica (J. Ellis & Solander) Huisman & Borowitzka	Tux⁴, OrV⁸	10-20	A, B, C
7. Tricleocarpa fragilis (Linnaeus ) Huisman & R.A. Townsend	Tux⁴, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹	1-20	A, B, C, F
8. Gloiocallis dendroidea (P. Crouan & H. Crouan) Showe M. Lin, Huisman & D.L. Ballantine, 2014	B¹	1	ND
9. Liagora ceranoides J.V. Lamouroux	Tux⁴, En⁸, Th⁸	1	A, B, C
10. Nemalion helminthoides (Velley) Batters	Lb^{1, 2, 3}	1	C, F
Orden: Corallinales
11. Jania capillacea Harvey	Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹	1-20	E, Halimeda opuntia, Galaxaura rugosa, Laurencia obtusa, Stypopodium zonale
12. Jania adhaerens J.V. Lamouroux	Tux⁴, En⁸, Th⁸	1-20	A, Halimeda opuntia, Laurencia obtusa
13. Jania rubens (Linnaeus) J.V. Lamouroux	Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸	1-20	A, E, Halimeda opuntia, Laurencia obtusa
14. Amphiroa beauvoisii J.V. Lamouroux	OrV⁷	10-20	A
15. Amphiroa brasiliana Decaisne	OrV⁷	10-20	A
16. Amphiroa fragilissima (Linnaeus) J.V. Lamouroux	Tux^{4, 8}, En⁸, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹	1	A, B, F, Padina gymnospora, Halimeda opuntia,
17. Amphiroa hancockii W.R. Taylor, 1942	B¹	1	ND
18. Amphiroa rigida J.V. Lamouroux	Tux⁷, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹	1-20	A, B, F, Padina gymnospora, Halimeda opuntia
19. Goniolithon decutescens (Heydrich) Foslie in Howe	Lb^{1, 2}	1	A, B, F, Padina gymnospora, Halimeda opuntia,
20. Phenophyllum fragile Kützing	Lb^{1, 2, 3}, B¹	1	A, B, Hypnea spinella, Laurencia obtusa
Orden: Gelidiales
21. Gelidium americanum (W. R. Taylor) Santelices	Lb³	1	A, B
22. Parviphycus trinitatensis (W. R. Taylor) M. J. Wynne W. R. Taylor	Tux⁶, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb⁸	5-20	A, B
23. Pterocladiella sanctarum (Feldmann & Hamel) Santelices	OrV⁷	20	A, B
24. Pterocladiella capillacea (S. G. Gmelin) Santelices & Hommersand	Tux⁶	10-20	A, B
Orden: Bonnemaisoniales
25. Asparagopsis taxiformis (Delile) Trevisan de Saint-Léon	Tux⁸, En⁵, Th⁸, OrV⁷, Lb⁸	10-20	A, D
Orden: Nemastomatales
26. Predaea feldmannii Børgesen	Tux⁸, En^{6, 8}, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸	5-20
Orden: Rhodymeniales
27. Champia parvula (C. Agardh) Harvey	Lb^{1, 2, 3}	1	F, Hypnea spinella, Dictyota bartayresiana, Halimeda opuntia
28. Coelothrix irregularis (Harvey) Børgesen	Tux⁵, En⁸	1	A, Halimeda opuntia
29. Ceratodictyon intricatum (C. Agardh) R.E. Norris	Tux⁸, En⁸, B¹	1	A, B
Orden: Ceramiales
30. Centroceras clavulatum (C. Agardh) Montagne	Tux^{6, 8}, En⁸, Th⁸, Lb^{3, 8}	10-20	A, B, Dictyota bartayresiana
31. Ceramium brevizonatum var. caraibicum H.E. Petersen & Børgesen in Børgesen	Tux⁸, En⁸, Lb⁸	1-20	A, B, Laurencia obtusa
32. Ceramium cimbricum H.E. Petersen in Rosenvinge	En⁸, OrV⁷, Lb⁸	1-20	A, B, F, Dictyota menstrualis, Laurencia obtusa
33. Ceramium cruciatum F.S. Collins & Hervey	Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁷	10-20	Halimeda opuntia, Laurencia intricata
34. Ceramium flaccidum (Harvey ex Kützing) Ardissone	Lb^{2, 3}	1	F, Dictyota bartayresiana, Laurencia intricata
35. Ceramium subtile J.Agardh	Lb¹	1	ND
36. Ceramium virgatum Roth	Tux⁶, OrV⁷, B1	10-20	Laurencia obtusa, Rhipocephalus phoenix f. brevifolius
37. Crouania attenuata (C. Agardh) J. Agardh	En⁸, OrV⁸	10-20	A, Dictyota menstrualis, Laurencia obtusa
38. Spyridia filamentosa (Wulfen) Harvey	Tux⁸, Lb³	1-20	A, B, F
39. Spyridia hypnoides (Bory) Papenfuss	Tux⁸, En⁸, Lb¹	1-20	A, B, D
40. Anotrichium tenue (C. Agardh) Nägeli	OrV⁸, B¹	10-20	Laurencia intricata, Hypnea spinella
41. Griffithsia schousboei Montagne	OrV⁸	10-20	Stypopodium zonale
42. Wrangelia argus (Montagne) Montagne	Tux⁴, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸, B¹	1-20	A, B, D, Amphiroa fragilissima, Laurencia obtusa
43. Dictyurus occidentalis J. Agardh	Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb⁸	10-20	A
44. Acanthophora spicifera (M. Vahl) Børgesen	Tux⁴, En⁸, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹	1	A, B, D, C, F
45. Chondria littoralis Harvey	Tux⁵	1	A, B, D
46. Digenea simplex (Wulfen) C. Agardh	Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹	10-20	A, B, D
47. Laurencia intricata J.V. Lamouroux	Tux⁵, En⁸, Th⁸, Lb⁸	1	A, B, D
48. Laurencia obtusa (Hudson) J.V. Lamouroux	Tux⁷, En⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹	1-20	A, B, D
49. Palisada perforata (Bory de Saint-Vincent) K. W. Nam	Lb^{1, 2, 3, 8}	1	A, B, D
50. Yuzurua poiteaui (J.V. Lamouroux) Martin-Lescanne	Tux⁴, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹	1-20	A, B, D, Lobophora sp., Halimeda opuntia
51. Neosiphonia sphaerocarpa (Borgesen) Kim & Lee	Lb^{1, 2, 3}	1	A, B, D
52. Polysiphonia subtilissima Montagne	OrV⁸, B¹	10-20	A, B, D
53. Wrightiella blodgettii (Harvey) F. Schmitz	Tux⁵	1	A
Orden: Gigartinales
54. Hypnea musciformis (Wulfen) J.V. Lamouroux	Tux⁴, En⁸, Th⁸, Lb⁸	1	A, B, D, C, F
55. Hypnea spinella (C.Agardh) Kützing	Tux⁴, En⁸, Th⁸, Lb⁸, B¹	1	A, B, D, C, F
56. Hypnea valentiae (Turner) Montagne	En⁸, Lb^{1, 2, 3}, B¹	1	A, B, D, C, F
57. Wurdemannia miniata (Sprengel) Feldmann & Hamel	Lb^{1, 2, 3}	1	A, F
División: Ochrophyta
Clase: Phaeophyceae
Orden: Sphacelariales
58. Sphacelaria tribuloides Meneghini	Tux⁶, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb ^{1, 2, 3, 8}, B¹	1-20	A, B, Halimeda opuntia
Orden: Ectocarpales
59. Feldmannia mitchelliae (Harvey) H.-S. Kim	En⁸, OrV⁷, Lb⁸	1-20	A, B, F
60. Chnoospora minima (Hering) Papenfuss	Lb^{1, 3}	1	A
61. Colpomenia sinuosa (Mertens ex Roth) Derbes & Solier in Castagne	Tux^{5, 8}, En⁸, Th⁸, Lb^{3, 8}, B¹	1	A, B, D, Halimeda opuntia
62. Hydroclathrus clathratus (C. Agardh) Howe	Tux⁵, Lb^{1, 2, 3}, B¹	1	A, B, D
Orden: Dictyotales
63. Canistrocarpus cervicornis (Kützing) De Paula & De Clerck	Tux⁶, En⁸, OrV⁷, Lb^{1, 2, 3, 8}	1-20	A, B, C
64. Dictyopteris jamaicencis W. Taylor	Tux⁸, En⁸, Lb⁸	1	A, B
65. Dictyota bartayresiana J.V. Lamouroux	Tux^{5, 8}, En⁸, Lb⁸	1-20	A, B, F, Halimeda opuntia, Galaxaura rugosa
66. Dictyota caribaea Hörnig & Schnetter	OrV⁷	1-20	A, B, C
67. Dictyota crenulata J. Agardh	OrV⁷	10-20	A, B, C
68. Dictyota menstrualis (Hoyt) Schnetter, Hörning & Weber-Peukert	Tux^{4, 6, 8}, En⁸, Lb⁸	1	A, B, C
69. Dictyota pulchella Hörnig & Schnetter	Tux^{4, 8}, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb^{2, 8}	10-20	A, B, C, E
70. Dictyota spiralis Montagne	OrV⁷	10-20	A, B, C
71. Lobophora variegata (J.V. Lamouroux ) Womersley ex E.C. Oliveira	Tux⁶	1	A, B, C
72. Lobophora sp.	Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸	10-20	A, B, C
73. Padina boergesenii Allender & Kraft	Tux³, Th³, Lb³	1	A, B, C
74. Padina gymnospora (Kützing) Sonder	Lb^{1, 2}, B¹	1	A, B, C
75. Padina pavonica ( Linnaeus) Thivy in W. R. Taylor	Tux^{3, 6, 8}, En^{5, 8}, Th⁸, Lb^{1, 2, 3}	1	A, B, C
76. Padina perindusiata Thivy in W.R. Taylor	Lb³	1	A, B, C
77. Padina sanctae-crucis Børgesen, 1914	Tux^{4, 8}, En⁸, Lb^{3, 8}	1	A, B, C
78. Spatoglossum schroederi (C. Agardh) Kϋtzing	En⁸, Lb⁸	1	A, B, C
79. Stypopodium zonale J.V. Lamouroux) Papenfuss	OrV⁷, Lb⁸	10-20	A, B, C
Orden: Sporochnales
80. Sporochnus pedunculatus (Hudson) C. Agardh	En⁸	1	A, D
División: Chlorophyta
Clase: Ulvophyceae
Orden: Ulvales
81. Ulva compressa Linnaeus	Lb³	1	A, B
82. Ulva intestinalis Linnaeus	Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸	1	A, B
83. Ulva flexuosa Wulfen	Tux⁸, En⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}	1	A, B
84. Ulva lactuca Linnaeus	Tux⁸, Lb⁸	1	A, B, D
Orden: Cladophorales
85. Anadyomene saldanhae A.B. Joly & E.C. Oliveira	Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb⁸	5-20	A, B
86. Anadyomene stellata (Wulfen) C. Agardh	Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸	5-20	A, B,
87. Microdictyon marinum (Bory de Saint-Vincent) P.C. Silva	Tux⁴	1
88. Cladophoropsis macromeres Taylor	Tux⁴	1	A, D, F
89. Cladophoropsis membranacea (Hofman Bang ex C.Agardh) Børgesen	Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}	1	A, D, F
90. Chaetomorpha antennina (Bory de Saint-Vincent) Kützing (Bory) Kützing	Tux⁸, Lb⁸	1	A, D
91. Chaetomorpha gracilis Kϋtzing	Tux⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}	1	A, D
92. Chaetomorpha linum (O.F. Müller) Kützing	Tux⁸, En⁸, Lb⁸	1	A, D, F
93. Dictyosphaeria cavernosa (Forsskål) Børgesen (Forsskal) Børgesen	Tux^{4, 6}, En⁵, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}	1	A, B, C, E, F
94. Dictyosphaeria ocellata (M.A. Howe) Olsen-Stojkovich	Tux^{4, 6}, En⁸, Th⁸, Lb⁸	1	A, B, C, E, F
95. Dictyosphaeria versluysii Weber-van Bosse	Tux⁴, En⁸	1	A, B, C, E, F
96. Valonia macrophysa Kützing 1843	Tux⁶, En⁸, Th⁸, OrV⁷, Lb⁸	1-20	A, B, C, E
97. Valonia ventricosa J. Agardh, 1887	Tux⁶, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}	1-20	A, B, C, E
Orden: Bryopsidales
98. Bryopsis pennata J.V. Lamouroux	Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸	1	A, B
99. Bryopsis plumosa (Hudson) C. Agardh	Tux⁸, En^{6, 8}, Lb⁸	1	A, B
100. Derbesia sp.	Tux⁴	1
101. Caulerpa ambigua (Okamura) Prud’homme van Reine y Lokhorst	Tux⁴	1	A, D
102. Caulerpa ashmeadii Harvey 1858	En⁶	1	A, D
103. Caulerpa chemnitzia (Esper) J.V. Lamououx	Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV7, Lb⁸	5-20	A, D, E
104. Caulerpa cupressoides (Vahl) C. Agardh	Tux⁴, Lb^{1, 2, 3, 8}	1	A, D
105. Caulerpa microphysa (Weber-van Bosse) Feldmann	Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}	10-20	A, D, E
106. Caulerpa prolifera (Forsskål) J.V. Lamouroux	Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸	10-20	A, D
107. Caulerpa racemosa var. macrophysa (Sonder ex Kützing) W.R. Taylor	Tux^{4, 8}, En^{5, 8}, Th⁸, OrV⁷, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹	1-20	A, D, E
108. Caulerpa sertularioides (S.G. Gmelin) M.A. Howe	Tux^{4, 8}, En⁸, Th⁸, Lb^{2, 3, 8}, B¹	1	A, D
109. Caulerpa verticillata f. charoides Weber-Van Bosse	Tux⁸, En⁸, Th⁸, OrV⁸, Lb^{1, 8}	10-20	A, E
110. Codium intertextum Collins & Hervey	Tux⁸, En⁵, OrV⁷	10-20	A, B
111. Codium isthmocladum Vickers	En⁸	10-20	A, B
112. Halimeda discoidea Decaisne	Th⁸, OrV⁸, Lb⁸	20	A, B
113. Halimeda goreauii W.R. Taylor	Lb¹	1	A, B
114. Halimeda opuntia (Linnaeus) J.V. Lamouroux	Tux⁸, En^{6, 8}, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹	1	A, B
115. Avrainvillea hayi D.S. Littler & M.M. Littler	En⁸	20	A, D
116. Avrainvillea longicaulis (Kützing) G.Murray & Boodle	Lb³	20	A, D
117. Avrainvillea nigricans f. floridana D.S. Littler & M.M. Littler	En⁸	20	A, D
118. Penicillus capitatus Lamarck	En⁸, Th⁸	1	A, D
119. Penicillus lamourouxii Decaisne	Tux⁵,Th⁸, Lb⁸	1	A, D
120. Penicillus sp.	En⁸	1	A, D
121. Rhipocephalus phoenix f. brevifolius (J.Ellis & Solander) Kützing	Tux⁴, En⁵, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}	1	A, D
122. Rhipocephalus phoenix f. longifolius A. Gepp & E.S. Gepp	Tux⁴, En⁵, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}	1	A, D
123. Udotea flabellum (Ellis et Solander) Howe	Lb^{2, 3}	20	A, D
Orden: Dasycladales
124. Neomeris annulata Dickie	Tux⁴, En⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}, B¹	10-20	A, D
125. Neomeris mucosa M.Howe	En⁸	10-20	A, D
126. Acetabularia crenulata J.V. Lamouroux	En⁸	20	A, D
127. Acetabularia schenckii K. Möbius	Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb^{1, 2, 3, 8}	20	A, D
128. Parvocaulis pusillus (M. Howe) S. Berger, U. Fettweiss, S. Gleissberg, L.B. Liddle, U. Richter, H. Sawitzky & G.C. Zuccarello	En⁸	20	A, D
División: Tracheophyta
Clase: Monocotiledonia
Orden: Alismatales
129. Halophila decipiens Ostenfeld	Tux⁸, En⁸, Th⁸, Lb⁸	20	A, D
130. Thalassia testudinum K.D. Koenig	Tux^6,8, Lb^2,8	1	B, D

Abreviaciones: arrecifes Tuxpan (Tx), Enmedio (En), Tanhuijo (Th), Oro Verde (OrV), Lobos (Lb), Blanquilla (B), datos no disponibles (ND). Referencias bibliográficas. 1. Huerta-Múzquiz y Barrientos (1965). 2. Chávez et al. (1970). 3. Ortega et al. (2001). 4. González-Gándara et al. (2007). 5. González-González et al. (2016). 6. Aguilera-Pérez y De la Cruz-Francisco (2017). 7. Luna y De la Cruz-Francisco (2017). 8. Registros del presente estudio. Tipos de sustrato: rocas (A), guijarros (B), coral muerto (C), arena (D), corales vivos (E), pradera de pastos marinos (F).

A escala de arrecife, el número de especies se incrementó de manera importante, en especial para el arrecife Enmedio, se reportaban en la literatura 11 especies y en este estudio se encontraron 74 registros nuevos lo que aumenta la riqueza florística a 80 especies, así mismo, para el arrecife Lobos de 55 especies (reportadas anteriormente) aumentó a 91 taxa. Mientras, las 53 especies que se observaron en el arrecife Tanhuijo constituyen los primeros registros, en cambio, las 27 especies que presenta el arrecife Blanquilla son registros que fueron obtenidos de la literatura (Cuadro 1 y 2).

Al comparar la riqueza de especies en el nivel de arrecife, los de tipo emergente con mayor riqueza (>80 especies) fueron Lobos, Tuxpan y Enmedio, por el contrario, el Blanquilla tiene menos registros de especies, al igual que el arrecife sumergido Oro Verde con 43 especies de algas (Cuadro 1). En orden de importancia, Chlorophyta seguido de Rhodophyta fueron las más representativas en los arrecifes emergentes, por el contrario, para el arrecife sumergido Oro Verde la riqueza de Chlorophyta decrece y prevalece Rhodophyta (Cuadro 1 y 2).

Por otra parte, de las 55 especies de Rhodophyta registradas en este estudio, al menos 21 especies se observaron en 4 arrecifes del SALT, la mayoría de las especies se encontraron en rocas coralinas y guijarros (Cuadro 2). En la laguna arrecifal (1 m de profundidad) se encontraron 24 especies, entre las comunes Amphiroa fragilissima y Acanthophora spicifera, así como también especies del género Ceramium, Laurencia e Hypnea (Cuadro 2). Mientras, otras 16 se observaron entre 1-20 m de profundidad (Cuadro 2), por ejemplo, Dichotomaria marginata (Fig. 2A) y Galaxaura rugosa (Fig. 2B). Entre los 5 y 20 m de profundidad, se contemplaron principalmente 2 especies: Parviphycus trinitatensis y Predaea feldmannii (Fig. 2E). En cambio, en las zonas más profundas (10-20 m) se encontraron 14 especies (Cuadro 2), siendo comunes Tricleocarpa cylindrica (Fig. 2C), Asparagopsis taxiformis (Fig. 2D) y Dictyurus occidentalis (Fig. 2F). Cabe resaltar que 19 especies de algas rojas se encontraron como epifitas de otras macroalgas rojas, pardas y verdes (e. g. Galaxaura, Padina, Laurencia, Halimeda) (Cuadro 2).

Fig. 2 Especies de algas y fanerógamas del Sistema Arrecifal Lobos-Tuxpan, México. A. <italic>Dichotomaria marginata</italic>. B. <italic>Galaxaura rugosa</italic>. C. <italic>G. subverticillata</italic>. D. <italic>Asparagopsis taxiformis</italic>. E. <italic>Predaea feldmannii</italic>. F. <italic>Dictyurus occidentalis</italic>. G. <italic>Dictyota bartayresiana</italic>. H. <italic>D. pulchella</italic>. I. <italic>Stypopodium zonale</italic>. J. <italic>Anadyomene saldanhae</italic>. K. <italic>A. stellata</italic>. L. <italic>Chaetomorpha gracilis</italic>. M. <italic>Dictyosphaeria cavernosa</italic>. N. <italic>D. ocellata</italic>. Ñ. <italic>Valonia macrophysa</italic>. O. <italic>V. ventricosa</italic>. P. <italic>Bryopsis plumosa</italic>. Q. <italic>Caulerpa chemnitzia</italic>. R. <italic>C. cupresoides</italic>. S. <italic>C. microphysa</italic>. T. <italic>C. prolifera</italic>. U. <italic>C. racemosa</italic>. V. <italic>C. sertularioides</italic>. W. <italic>C. verticillata</italic>. X. <italic>Codium intertextum</italic>. Y. <italic>Halimeda discoidea</italic>. Z. <italic>H. opuntia</italic>. AA. <italic>Avrainvillea hayi</italic>. AB. <italic>Rhipocephalus phoenix</italic> f. <italic>brevifolius</italic>. AC. <italic>Neomeris annulata</italic>. AD. <italic>N. mucosa</italic>. AE. <italic>Acetabularia schenckii</italic>. AF. <italic>Parvocaulis pusillus</italic>. AG. <italic>Halophila decipiens</italic>. AH. <italic>Thalassia testudinum</italic>

En relación con las Ochrophyta (algas pardas), solamente 6 especies se registraron en al menos 4 arrecifes del SALT. Principalmente estas algas pardas se establecen en rocas coralinas y guijarros, distribuyéndose más de la mitad de las especies en la laguna arrecifal (Cuadro 2), donde las más comunes de observar son Colpomenia sinuosa, Dictyota menstrualis y Padina gymnospora. Otras especies como Sphacelaria tribuloides y Dictyota bartayresiana (Fig. 2G), se observaron en las áreas someras y profundas de los arrecifes, en cambio, Dictyota pulchella (Fig. 2H), Stypopodium zonale (Fig. 2I) y Sphorocnus pedunculatus tienen distribución en las zonas profundas de los arrecifes (Cuadro 2).

Respecto a las Chlorophyta, 20 especies fueron observadas en al menos cuatro arrecifes del SALT, donde el 56% del total de especies son propias de la laguna arrecifal (Cuadro 2), siendo las más frecuentes de avistar: Chaetomorpha gracilis (Fig. 2L), Dictyosphaeria cavernosa (Fig. 2M), Dictyosphaeria ocellata (Fig. 2N), Bryopsis plumosa (Fig. 2P), Caulerpa cupresoides (Fig. 2R), Caulerpa racemosa (Fig. 2U), Caulerpa sertularioides (Fig. 2V), Halimeda opuntia (Fig. 2Z) y Rhipocephalus phoenix (Fig. 2AB). En cambio, algunas especies comunes como Valonia macrophysa (Fig. 2Ñ) y Valonia ventricosa (Fig. 2O) se registraron en la planicie como en las zonas profundas de 20 m (Cuadro 2). Así también, varias especies de algas verdes se observaron únicamente en las pendientes profundas (Cuadro 2), entre las que se pueden mencionar son: Anadyomene saldanhae (Fig. 2J) Anadyomene stellata (Fig. 2K), Caulerpa chemnitzia (Fig. 2Q), Caulerpa microphysa (Fig. 2S), Caulerpa verticillata (Fig. 2W) y Codium intertextum (Fig. 2X), las cuales se establecen en roca coralina. Mientras, Caulerpa prolifera (Fig. 2T), Halimeda discoidea (Fig. 2Y), Avrainvillea hayi (Fig. 2AA), Neomeris mucosa (Fig. 2AC), Neomeris annulata (Fig. 2AD), Acetabularia schenckii (Fig. 2AE) y Parvocaulis pusillus (Fig. 2AF) son típicos en zonas de arena del talud arrecifal (Cuadro 2).

En cuanto a las fanerógamas marinas, se registra por primera vez para la zona Halophila decipiens (Fig. 2AG), esta especie se distribuye en el talud arrecifal de sotavento de los arrecifes emergentes. También se registró la presencia de Thalassia testudinum (Fig. 2AH) principalmente en la laguna arrecifal de Tuxpan y Lobos (Cuadro 2).

Nuevo registro para el suroeste del golfo de México

Clase Phaeophyceae

Orden Sporochnales

Familia Sporocnaceae

Género Sporochnus C.Agardh

Sporochnus pedunculatus (Hudson) C.Agardh

Basiónimo: Fucus pedunculatus Hudson Fig. 3A-G

Fig. 3 A. Presencia <italic>Sporochnus pedunculatus</italic> en el arrecife Enmedio. B. Ramas secundarias con receptáculos. C. Corte transversal del talo. D. Células medulares y periféricas del talo. E. 1. Superficie de rama secundaria. 2. Receptáculo. 3. Mechón filamentoso. F-G. Vista aumentada de células que componen el mechón

Material examinado. CBUV-00020, arrecife Enmedio (21.082253° N, -97.258003° W), recolectado a 12 m de profundidad, col. V. De la Cruz-Francisco, 18 junio, 2014.

Descripción. Frondas de color amarillento observadas en vivo (Fig. 3A), y amarillo ocre conservadas en formol (Fig. 3B). Talo principal de textura lisa, cilíndrico de 1 mm de diámetro y 30-40 cm de altura, sujeto al sustrato por un disco basal. Células medulares de 36.4-55.8 μm de diámetro y de 60.5-120.8 μm de largo (Fig. 3C-D). Células periféricas de 8.7-11.5 μm de diámetro (Fig. 3D). Ramas secundarias de 0.7-1 mm de diámetro y de 4-6 cm de largo (Fig. 3E-1), las cuales se distribuyen de manera helicoidal a lo largo de los talos. En fase reproductiva presentan un pedicelo y un mechón terminal de filamentos color pardo (Fig. 3E-3). Cada rama posee de 16-28 receptáculos, estas estructuras son gruesas y ovoides de 0.3-0.7 mm diámetro y de 1.5-2.3 mm de largo (Fig. 3E-2). Los filamentos se extienden de 3-7 mm, lo componen células de 17-20 μm de largo y 4.5-5 μm de ancho (Fig. 3E-G).

Hábitat. Sustrato arenoso y roca coralina, a 12 m de profundidad.

Distribución geográfica. Especie de amplia distribución, Europa, Asia, África (Fredericq et al. 2009). En el Atlántico Occidental, presente en Cuba (Alfonso et al. 2014; Suárez et al. 2015) y en el Caribe (Littler & Littler, 2000; Fredericq et al. 2009). México: Yucatán (Huerta-Musquiz et al. 1987). Se cita por primera vez para el suroeste del golfo de México.

Comentarios. Las características morfológicas del espécimen estudiado coinciden con las descripciones de Brostoff, (1984), Boraso & Negri (1997), Littler & Littler (2000) y Alfonso et al. (2014). En el golfo de México, además de S. pedunculatus, se ha reportado otra especie más, Sporochnus bolleanus Montagne con distribución para el sureste del golfo (Fredericq et al. 2009), sin embargo, esta especie presenta mayor longitud en el pedicelo (6-8 mm), receptáculo (1-10 mm) y en los filamentos del penacho (10-15 mm) (Brostoff, 1984).

DISCUSIÓN

El presente trabajo aporta una lista actualizada de la flora bentónica del SALT, el cual está compuesta por 130 especies. Esta riqueza florística representa un buen avance para el área natural protegida, dado que previamente se reportaban en la literatura 102 especies que correspondían en su mayoría al arrecife Lobos y Tuxpan. Sin embargo, dentro del corredor arrecifal, en el sistema arrecifal SAV se tienen registradas 280 especies hasta el 2019 (Galicia-García & Morales-García, 2007; Robinson et al. 2012; Galicia-García et al. 2013; Godínez-Ortega et al. 2015; 2019), por lo que, se considera que el inventario florístico del SALT puede estar aún incompleto, razón por la cual se requiere mayor número de estudios encaminados a inventariar y explorar arrecifes poco conocidos de esta zona arrecifal.

En las lagunas arrecifales del SALT se observó mayor riqueza de algas, lo cual se puede atribuir a que es una zona protegida del oleaje, que a diferencia de la cresta arrecifal donde las especies están expuestas al estrés ambiental por el embate de las olas (Lehman, 2010), también se puede atribuir a la existencia de una amplia variedad de sustratos como rocas, guijarros, arena y pastos marinos, los cuales son utilizados por las propias algas para fijarse (González-Gándara et al. 2007). En cambio, en las pendientes profundas se registró menor número de especies de algas, lo cual puede estar asociado al tipo de fondo que principalmente es sustrato duro y con corales masivos donde esencialmente se establecen algas rojas filamentosas (González-González et al. 2016), las cuales forman tapetes que cubren las rocas coralinas y las superficies muertas de los corales (Lehman, 2010; Luna & De la Cruz-Francisco, 2017).

Las algas rojas encabezan el grupo con mayor riqueza de especies para el SALT, lo cual es normal, dado que es el grupo más diverso en especies en el golfo de México (Ortega et al. 2001; Fredericq et al. 2009). No obstante, dentro del corredor arrecifal, se han reportado mayor número de especies de algas rojas en el SAV, siendo las familias más representativas: Corallinacaea, Gelidiaceae, Gracilariaceae, Ceramiaceae, Rhodomelaceae, (Galicia-García & Morales-García, 2007), por lo tanto, se recomienda un mayor esfuerzo de trabajo de tipo taxonómico, con la finalidad de contribuir con más registros de este grupo de algas para la zona de estudio, además es un grupo difícil de identificar y que requiere de estudios detallados (Lehman, 2010).

Por otra parte, varias especies de rodófitas (G. rugosa, Amphiroa y Laurencia), ocrofitas (Padina gymnospora y Dictyota menstrualis) y clorófitas (C. sertulariodes, C. racemosa y D. cavernosa, H. opuntia y R. phoenix) observadas en zonas protegidas de la laguna arrecifal denotan una típica zonación que ha sido descrita previamente por Lehman (2010) para el arrecife Isla de Enmedio. No obstante, la distribución de las macroalgas depende del tipo de sustrato (Garduño-Solórzano et al. 2005) y las rocas coralinas parecen ser uno de los sustratos más importantes para las macroalgas, dado que se registró la mayor cantidad de especies en el presente estudio, estos sustratos son duros, consolidados y por su textura rugosa favorecen el desarrollo de algas (Garduño-Solórzano et al. 2005; González-Gándara et al. 2007; Martínez-Daranas et al. 2016).

Particularmente, Valonia spp y Dictyosphaeria spp fueron encontradas en los intersticios de las rocas coralinas y entre colonias de coral, habitualmente es una estrategia para protegerse del oleaje (Garduño-Solórzano et al. 2005). Así también, Dictyota menstrualis, Dictyota bartayresiana, Caulerpa racemosa, Caulerpa cupressoides y Halimeda opuntia fueron comunes en zonas dominadas por corales escleractinios (Porites spp y Pseudodiploria spp), estos resultados coinciden con lo reportado por Mateo-Cid et al. (1996) para el arrecife Isla Verde y por González-Gándara et al. (2007) para el arrecife Tuxpan.

La arena constituye un buen sustrato para las Chlorophyta, principalmente las que presentan mecanismos de adaptación para anclarse al sustrato e. g. Caulerpa, Halimeda y Rhipocephalus (Garduño-Solorzano et al. 2005). En las lagunas arrecifales del SALT, fue común observar varias especies de algas verdes psamófilas como C. racemosa, C. sertularioides, H. opuntia, Avrainvillea nigricans y R. phoenix, estas especies también son típicas en otras regiones del golfo de México (Mateo-Cid et al. 1996; 2013; Garduño-Solorzano et al. 2005). Sin embargo, en las zonas arenosas profundas del SALT, la composición de especies psamólifas está representado por otras: Halimeda discoidea, Avrainvillea hayi, Neomeris annulata, Acetabularia schenckii y Parvocaulis pusillus, las cuales pueden distribuirse en profundidades >30 m (Littler & Littler, 2000).

Cabe mencionar que especies como Caulerpa chemnitzia, Caulerpa microphysa, Caulerpa verticillata, Codium intertextum, A. saldanhae, H. discoidea, A. taxiformis y S. zonale, fueron observadas particularmente en las zonas profundas de los arrecifes del SALT, esta distribución batimétrica parece ser normal dado que en áreas del Caribe y la Florida este ensamblaje de macroalgas se han encontrado a más de 60 m de profundidad (Littler & Littler, 2000; Leichter et al. 2008).

Respecto a las fanerógamas marinas, de las nueve especies que se reportan para México (Atlántico y Pacifico) (Lot-Helgueras, 1971; Cervantes-Maldonado & Quintero, 2016), se encontraron en este estudio: Halophila decipiens y Thalassia testudinum. La única que se observó en la mayoría de los arrecifes del SALT fue H. decipiens, principalmente en zonas arenosas de sotavento, mientras, T. testudinum se encontró, en especial, en el arrecife Lobos, donde ocupa extensas áreas en la laguna arrecifal (Chávez et al. 1970), también se observó en el Tuxpan, pero presenta un reducido parche al oeste de la planicie arrecifal (González-Gándara et al. 2007; Aguilera-Pérez & De la Cruz-Francisco, 2017). Ambas especies de pastos son las únicas de la flora marina del SALT que presentan un estatus de riesgo dado que están catalogadas en la NOM-059-SEMARNAT-2010 con la categoría de protección especial (DOF, 2019), por lo que es necesario redoblar esfuerzos para estudiar la estructura poblacional de cada una de estas fanerógamas marinas.

Si bien, este trabajo documenta la riqueza florística de al menos cinco de los diez arrecifes que se distribuyen en el norte de Veracruz, aún es necesario dirigir más estudios en arrecifes que no han sido explorados como los arrecifes que recientemente han sido cartografiados: arrecife Corazones y Pantepec Sur, además de los arrecifes Blake y Piedras Altas, estos últimos localizados frente a las costas de los municipios de Cazones y Tecolutla (Ortiz-Lozano et al. 2019).

Por último, el presente trabajo sienta las bases para continuar con más estudios relacionados a la flora marina bentónica en los arrecifes del SALT, a fin de obtener una lista completa de las especies, de esta manera se podrá realizar comparaciones de la riqueza, distribución y conectividad con los demás arrecifes coralinos del golfo de México. Así también, la presente información puede ser de utilidad en materia de manejo y protección en especial para salvaguardar las especies en riesgo como los pastos marinos. Adicionalmente, la actual lista de algas y fanerógamas del SALT evidencia resultados positivos, con un incremento considerable de la riqueza florística para los arrecifes Lobos, Enmedio y Tuxpan, no obstante, también expone huecos de información como sucede con los arrecifes Blanquilla y Medio.

AGRADECIMIENTOS

Agradecemos a Itzel Morales Quijano, Irving Abad Aguilar, Ivonne Luna Ortega y Víctor Alfonso Reyna Matezans por su apoyo en las labores de campo. A los revisores anónimos por sus comentarios y sugerencias.

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Zúñiga-Ríos, D., Martínez-Daranas, B. & Alcolado, P. M. (2012). Ficoflora de los arrecifes coralinos del archipiélago Sabana-Camagüey, Cuba. Ser. Oceanol., 11, 57-76.

Zúñiga-Ríos

Martínez-Daranas

Alcolado

P. M.

2012

Ficoflora de los arrecifes coralinos del archipiélago Sabana-Camagüey, Cuba

Ser. Oceanol. 11 57 76